• Гістологія аналіз

    Реферат: Дослідження в гістології

    11.08.2015

    Реферат: Дослідження в гістології

    Для прогресу гістології, цитології та ембріології велике значення має

    впровадження досягнень фізики і хімії, нових методів суміжних наук — біохімії,

    молекулярної біології, генної інженерії.

    Сучасні методи дослідження дозволяють вивчати тканини не тільки як єдине

    ціле, але і виділяти з них окремі типи клітин для вивчення їх

    життєдіяльності протягом тривалого часу, виділяти окремі клітинні

    органели та складові їх макромолекули (наприклад, ДНК), дослідити їх

    функціональні особливості.

    Такі можливості відкрилися у зв’язку з створенням нових приладів і технологій —

    різних типів мікроскопів, комп’ютерної техніки, рентгеноструктурного

    аналізу, застосування методу ядерно-магнітного резонансу (ЯМР), радіоактивних

    ізотопів і авторадиографии, електрофорезу і хроматографії, фракціонування

    клітинного вмісту за допомогою ультрацентрифугирования, поділу і

    культивування клітин, отримання гібридів; використання біотехнологічних

    Таким чином, біологічні об’єкти можна вивчати на тканинному, клітинному,

    субклітинному і молекулярному рівнях. Незважаючи на впровадження в природні

    науки різноманітних біохімічних, біофізичних, фізичних і

    технологічних методів, необхідних для вирішення багатьох питань, пов’язаних з

    життєдіяльністю клітин і тканин, гістологія в основі своїй залишається

    морфологічною наукою зі своїм набором методів. Останні дозволяють

    охарактеризувати процеси, що відбуваються в клітинах і тканинах, їх структурні

    особливості.

    Головними етапами цитологічного і гістологічного аналізу є вибір

    об’єкта дослідження, підготовка його для вивчення в мікроскопі, застосування

    методів мікроскопування, якісний і кількісний аналіз зображень.

    Об’єктами дослідження служать живі і фіксовані клітини і тканини, їх

    зображення, отримані в світлових і електронних мікроскопах або на

    телевізійному екрані дисплея. Існує ряд методів, що дозволяють проводити

    аналіз зазначених об’єктів.

    Методи мікроскопування гістологічних препаратів

    Основними методами вивчення біологічних мікрооб’єктів є світлова і

    електронна мікроскопія, які широко використовуються в експериментальній і

    клінічній практиці.

    Микроскопирование — основний метод вивчення мікрооб’єктів, використовуваний в

    біології понад 300 років. З моменту створення і застосування перших мікроскопів вони

    постійно удосконалювалися. Сучасні мікроскопи являють собою

    різноманітні складні оптичні системи, що володіють високою роздільною

    здатністю. Розмір найменшої структури, яку можна бачити в

    мікроскопі, визначається найменшою разрешаемым відстанню (do),

    яке в основному залежить від довжини хвилі світла (λ) і довжини хвиль

    електромагнітних коливань потоку електронів та ін. Ця залежність наближено

    визначається формулою do = 1/2λ Таким чином, чим менше довжина

    хвилі, тим менше дозволяється відстань і тим менші за розмірами

    мікроструктури можна бачити в препараті. Для вивчення гістологічних

    препаратів застосовують різноманітні види світлових мікроскопів та електронні

    мікроскопи.

    Світлова мікроскопія. Для вивчення гістологічних мікрооб’єктів

    застосовують звичайні світлові мікроскопи та їх різновиди, в яких

    використовуються джерела світла з різними довжинами хвиль. У звичайних світлових

    мікроскопах джерелом освітлення служить природний або штучний світло.

    Мінімальна довжина хвилі у видимій області спектру дорівнює приблизно 0,4 мкм.

    Отже, для звичайного світлового мікроскопа найменшу дозволяється

    відстань дорівнює приблизно 0,2 мкм (d0 = ½ * 0,4 мкм =

    0,2 мкм), а загальне збільшення (твір збільшення об’єктива на збільшення

    окуляра) може бути 1500-2500.

    Таким чином, у світловому мікроскопі можна бачити не тільки окремі клітини

    розміром від 4 до 150 мкм, але і їх внутрішньоклітинні структури — органели,

    включення. Для посилення контрастності мікрооб’єктів застосовують їх фарбування.

    Ультрафіолетова мікроскопія. Це різновид світлової мікроскопії. В

    ультрафіолетовому мікроскопі використовують більш короткі ультрафіолетові промені з

    довжиною хвилі близько 0,2 мкм. Дозволяється відстань тут в 2 рази менше, ніж в

    звичайних світлових мікроскопах, і становить приблизно 0,1 мкм (d0

    = ½ * 0,2 мкм =0,1 мкм). Отримане в ультрафіолетових променях невидиме

    оком зображення перетвориться у видиме за допомогою реєстрації на

    фотопластинці або шляхом застосування спеціальних пристроїв (люмінесцентний екран,

    електронно-оптичний перетворювач).

    Флюоресцентна (люмінесцентна) мікроскопія. Явища флуоресценції

    полягають у тому, що атоми і молекули деяких речовин, поглинаючи короткохвильове

    промені, переходять у збуджений стан. Зворотний перехід із збудженого

    стану в нормальний відбувається з випусканням світла, але з більшою довжиною

    хвилі. У флюоресцентної мікроскопі в якості джерел світла для збудження

    флюоресценції застосовують ртутні або ксенонові лампи надвисокого тиску,

    що володіють високою яскравістю в області спектра 0,25—0,4 мкм (ближні

    ультрафіолетові промені) і 0,4—0,5 мкм (синьо-фіолетові промені). Довжина світлової

    хвилі флуоресценції завжди більше довжини хвилі збуджуючого світла, тому їх

    розділяють з допомогою світлофільтрів і вивчають зображення об’єкта тільки в світі.

    флюоресценції. Розрізняють власну, або первинну, і наведену, або

    вторинну, флюоресценцію. Будь-яка клітина живого організму володіє власною

    флуоресценцією, однак вона часто буває надзвичайно слабкою.

    Первинної флюоресценцією мають серотонін, катехолами-ни (адреналін,

    норадреналін), що містяться в нервових, здорових та інших клітинах, після фіксації

    тканин в парах формальдегіду при 60-80 ° (метод Фалька).

    Вторинна флюоресценція виникає при обробці препаратів спеціальними

    барвниками — флюорохромами.

    Існують різні флюорохроми, які специфічно зв’язуються з

    певними макромолекулами (акридин помаранчевий, родамін, флюоресцеїном і ін).

    Наприклад, при обробці препаратів найчастіше вживається флюорохром

    акридиновый помаранчевий. У цьому випадку ДНК та її сполуки в клітинах мають

    яскраво-зелене, а РНК і її похідні — яскраво-червоне світіння. Таким чином,

    спектральний склад випромінювання несе інформацію про внутрішню будову об’єкта і

    його хімічному складі. Варіант методу флюоресцентної мікроскопії, при якому

    і збудження, і випромінювання флуоресценції відбуваються в ультрафіолетовій області

    спектру, отримав назву методу ультрафіолетової флюоресцентної

    мікроскопії.

    Фазово-контрастна мікроскопія. Цей метод служить для отримання

    контрастних зображень і безбарвних прозорих живих об’єктів, невидимих при

    звичайних методах мікроскопування. Як вже зазначалося, у звичайному світловому

    мікроскопі необхідна контрастність структур досягається за допомогою

    фарбування. Метод фазового контрасту забезпечує контрастність мов

    нефарбованих структур за рахунок спеціальної кільцевої діафрагми, розміщеній в

    конденсорі, і так званої фазової пластинки, що знаходиться в об’єктиві. Така

    конструкція об’єктива мікроскопа дає можливість перетворити не сприймаються

    оком фазові зміни пройшов через незабарвлений препарат світла в

    зміна його амплітуди, тобто яскравості одержуваного зображення. Підвищення

    контрасту дозволяє бачити всі структури, що розрізняються по показнику

    заломлення. Різновидом методу фазового контрасту є метод

    фазово-темнопольного контрасту, дає негативний порівняно з позитивним

    фазовим контрастом зображення.

    Мікроскопія в темному полі. темнопольном мікроскопі тільки світло, який

    дає дифракцію структур в препараті, досягає об’єктива. Відбувається це

    завдяки наявності в мікроскопі спеціального конденсора, який висвітлює

    препарат суворо косим світлом; промені від освітлювача направляються збоку. Таким

    чином, поле виглядає темним, а дрібні частинки в препараті відбивають світло,

    що далі потрапляє в об’єктив. Дозвіл цього мікроскопа не може бути

    краще, ніж у светлопольного мікроскопа, так як використовується така ж довжина

    хвилі. Але тут досягається більший контраст. Він використовується для вивчення

    живих об’єктів, авторадиографических об’єктів, наприклад зерен срібла, які

    виглядають світлими на темному полі. В клініці його застосовують для вивчення

    кристалів у сечі (сечова кислота, оксалати), для демонстрації спірохет,

    зокрема treponema pallidum, що викликає сифіліс і ін

    Інтерференційна мікроскопія. Різновидами фазово-контрастного

    мікроскопа є інтерференційний мікроскоп, який призначений для

    кількісного визначення маси тканини, і диференціальний інтерференційний

    мікроскоп (з оптикою Номарского), який спеціально використовують для вивчення

    рельєфу поверхні клітин та інших біологічних об’єктів.

    У интерференционном мікроскопі пучок світла від освітлювача розділяється на два

    потоку: один проходить крізь об’єкт і змінює по фазі коливання, другий йде,

    минаючи об’єкт. В призмах об’єктива обидва пучка з’єднуються і інтерферують між

    собою. В результаті будується зображення, в якому ділянки микрообъекта

    різної товщини і щільності розрізняються за ступенем контрастності. Провівши

    кількісну оцінку змін, визначають концентрацію та масу сухого

    речовини.

    Фазово-контрастний і інтерференційний мікроскопи дозволяють вивчати живі

    клітки. У них використовується ефект інтерференції, що виникає при комбінації

    двох наборів хвиль, який створює зображення мікроструктур. Перевагою

    фазово-контрастної, інтерференційної і темнопольної мікроскопії є

    можливість спостерігати клітини в процесі руху і мітозу. При цьому

    реєстрація руху клітин може здійснюватися з допомогою цейтраферной

    (покадрової) микрокиносъемки.

    Поляризаційна мікроскопія. Поляризаційний мікроскоп є

    модифікацією світлового мікроскопа, у якому встановлені два поляризаційних

    фільтра — перший (поляризатор) між пучком світла, і об’єктом, а другий

    (аналізатор) між лінзою об’єктива і оком. Через перший фільтр світло проходить

    тільки в одному напрямку, а другий фільтр має головну вісь, яка

    розташовується перпендикулярно першому фільтру, і він не пропускає світло.

    Виходить ефект темного поля. Обидва фільтра можуть обертатися, змінюючи

    напрямок пучка світла. Якщо аналізатор повернути на 90° по відношенню до

    поляризатору, то світло проходити через них не буде. Структури, що містять

    поздовжньо орієнтовані молекули (колаген, мікротрубочки, микрофиламенты), і

    кристалічні структури (в клітинах Лейдіга) при зміні осі обертання

    проявляються як світяться. Здатність кристалів або паракристаллических

    утворень до роздвоєння світлової хвилі на звичайну і перпендикулярну до

    ній називається подвійним лучепреломлением. Такою здатністю володіють фібрили

    поперечносмугастих м’язів.

    Електронна мікроскопія. Великим кроком вперед у розвитку техніки

    мікроскопії були створення і застосування електронного мікроскопа (див. рис. 1, Б).

    В електронному мікроскопі використовується потік електронів з більш короткими, ніж в

    світловому мікроскопі, довжинами хвиль. При напрузі 50000 В довжина хвилі

    електромагнітних коливань, що виникають при русі потоку електронів в

    вакуумі, дорівнює 0,0056 нм. Теоретично розраховано, що дозволяється відстань

    за цих умов може бути близько 0,002 нм, або 0,000002 мкм, тобто в 100 000 разів

    менше, ніж у світловому мікроскопі. Практично в сучасних електронних

    мікроскопах дозволяється відстань становить близько 0,1—0,7 нм.

    В даний час широко використовуються трансмісійні (просвічують)

    електронні мікроскопи (ТЕМ) і скануючі (растрові) електронні мікроскопи

    (СЕМ). За допомогою ТЕМ можна отримати лише площинне зображення досліджуваного

    микрообъекта. Для отримання просторового уявлення про структури

    застосовують СЕМ, здатні створювати тривимірне зображення. Растровий

    електронний мікроскоп працює за принципом сканування електронним

    микрозондом досліджуваного об’єкта, тобто послідовно «обмацує» гостро

    сфокусованим електронним пучком окремі точки поверхні. Для

    дослідження вибраної ділянки микрозонд рухається по його поверхні під

    дією відхиляючих котушок (принцип телевізійної розгортки). Таке

    дослідження об’єкта називається скануванням (видобування), а малюнок,

    яким рухається микрозонд, — растром. Отримане зображення виводиться на

    телевізійний екран, електронний промінь якого рухається синхронно з

    микрозондом.

    Головними достоїнствами растрової електронної мікроскопії є велика

    глибина різкості, широкий діапазон безперервної зміни збільшення (від

    десятків до десятків тисяч разів) і висока роздільна здатність.

    Електронна мікроскопія за методом заморожування — сколювання застосовується для

    для вивчення деталей будови мембран і міжклітинних з’єднань. Для

    виготовлення сколів клітки заморожують при низькій температурі (-160°С). При

    дослідженні мембрани площина відколу проходить через середину бішару ліпідів.

    Далі на внутрішні поверхні отриманих половинок мембран напилюють метали

    (платина, паладій, уран), вивчають їх за допомогою ТЕМ і мікрофотографії.

    Метод криоэлектронной мікроскопії. Швидко заморожений тонкий шар (близько

    100 нм) зразка тканини поміщають на мікроскопічну решітку і досліджують в

    вакуумі мікроскопа при -160°С.

    Метод електронної мікроскопії «заморожування — травлення» застосовують для

    вивчення зовнішньої поверхні мембран клітин. Після швидкого заморожування

    клітин при дуже низькій температурі блок розколюють лезом ножа. Утворюються

    кристали льоду видаляють шляхом сублімації води у вакуумі. Потім ділянки клітин

    відтіняють, напилюючи тонку плівку важкого металу (наприклад, платини). Метод

    дозволяє виявляти тривимірну організацію структур.

    Таким чином, методи заморожування — сколювання і заморожування — травлення

    дозволяють вивчати нефіксовані клітини без утворення в них артефактів,

    викликаються фіксацією.

    Методи контрастування солями важких металів дозволяють досліджувати

    електронному мікроскопі окремі макромолекули ДНК, великих білків

    (наприклад, міозин). При негативному контрастуванні вивчають агрегати

    макромолекул (рибосоми, віруси) або білкові филаменты (актиновые нитки).

    Електронна мікроскопія ультратонких зрізів, отриманих методом

    криоулътра-микротомии. При цьому методі шматочки тканин без фіксації і

    заливки в тверді середовища швидко охолоджують в рідкому азоті при температурі -196

    °С. Це забезпечує гальмування метаболічних процесів клітин і перехід води

    з рідкої фази в тверду. Далі блоки ріжуть на ультрамикротоме при низькій

    температурі. Такий метод приготування зрізів зазвичай використовують для визначення

    активності ферментів, а також для проведення імунохімічних реакцій. Для

    виявлення антигенів застосовують антитіла, пов’язані з частинками колоїдного

    золота, локалізацію якого легко виявити на препаратах.

    Методи надвисоковольтної мікроскопії. Використовують електронні мікроскопи

    з прискорюючою напругою до 3 000 000 Ст. Перевага цих мікроскопів в тому,

    що вони дозволяють досліджувати об’єкти великої товщини (1-10 мкм), так як при

    високої енергії електронів вони менше поглинаються об’єктом. Стереоскопічна

    зйомка дозволяє отримувати інформацію про тривимірної організації внутрішньоклітинних

    структур з високим дозволом (близько 0,5 нм).

    Рентгеноструктурний аналіз. Для вивчення структури макромолекул на

    атомарному рівні застосовують методи з використанням рентгенівських променів, що мають

    довжину хвилі близько 0,1 нм (діаметр атома водню). Молекули, що утворять

    кристалічну решітку, вивчають за допомогою дифракційних картин, які

    реєструють на фотопластинці у вигляді безлічі плям різної інтенсивності.

    Інтенсивність плям залежить від здатності різних об’єктів в решітці

    розсіювати випромінювання. Положення плям в дифракційній картині залежить від

    положення об’єкта в системі, а їх інтенсивність свідчить про його

    внутрішньої атомній структурі.

    Методи дослідження фіксованих клітин і тканин

    Дослідження фіксованих клітин і тканин. Основним об’єктом

    дослідження є гістологічні препарати, приготовані з

    фіксованих структур. Препарат може являти собою мазок (наприклад,

    мазок крові, кісткового мозку, слини, цереброспінальної рідини та ін),

    відбиток (наприклад, селезінки, тимуса, печінки), плівку з тканини (наприклад,

    сполучної або очеревини, плеври, м’якої мозкової оболонки), тонкий зріз.

    Найбільш часто використовується для вивчення зріз тканини або органу. Гістологічні

    препарати можуть вивчатися без спеціальної обробки. Наприклад, приготований

    мазок крові, відбиток, плівка або зріз органу можуть відразу розглядатися під

    мікроскопом. Але внаслідок того, що структури мають слабкий контраст, вони погано

    виявляються у звичайному світловому мікроскопі і потрібне використання спеціальних

    мікроскопів (фазово-контрастні та ін). Тому частіше застосовують спеціально

    оброблені препарати.

    Процес виготовлення гістологічного препарату для світлової та електронної

    мікроскопії включає наступні основні етапи: 1) взяття матеріалу і його

    фіксація, 2) ущільнення матеріалу, 3) приготування зрізів, 4) фарбування або

    контрастування зрізів. Для світлової мікроскопії необхідний ще один етап —

    висновок зрізів у бальзам або інші прозорі середовища (5). Фіксація

    забезпечує запобігання процесів розкладання, що сприяє збереженню

    цілісності структур. Це досягається тим, що взятий з органу маленький

    зразок або занурюють у фіксатор (спирт, формалін, розчини солей важких

    металів, осмиевая кислота, спеціальні фіксуючі суміші), або піддають

    термічній обробці. Під дією вивільнення у тканинах і органах відбуваються

    складні фізико-хімічні зміни. Найбільш суттєвим з них є

    процес необоротній коагуляції білків, внаслідок якого життєдіяльність

    припиняється, а структури стають мертвими, фіксованими. Фіксація

    призводить до ущільнення та зменшення обсягу шматочків, а також до поліпшення

    наступного фарбування клітин і тканин.

    Ущільнення шматочків, необхідне для приготування зрізів, провадиться

    шляхом просочування попередньо зневодненого матеріалу парафіном,

    целлоидином, органічними смолами. Більш швидке ущільнення досягається

    застосуванням методу заморожування шматочків, наприклад в рідкій вуглекислоті.

    Приготування зрізів проводиться на спеціальних приладах — микротомах

    (для світлової мікроскопії) і ультрамикротомах (для електронної

    мікроскопії).

    Фарбування зрізів (у світлової мікроскопії) або напилення їх солями металів (в

    електронної мікроскопії) застосовують для збільшення контрастності зображення

    окремих структур при розгляданні їх у мікроскопі. Методи фарбування

    гістологічних структур дуже різноманітні і обираються залежно від завдань

    дослідження. Гістологічні барвники поділяють на кислі, основні та

    нейтральні. В якості прикладу можна навести найбільш відомий основний

    барвник азур II, який фарбує ядра у фіолетовий колір, і кислий

    барвник — еозин, забарвлює цитоплазму в рожево-оранжевий колір.

    Виборче спорідненість структур до певних барвників обумовлено їх

    хімічним складом і фізичними властивостями. Структури, добре окрашивающиеся

    кислими барвниками, називаються оксифильными (ацидофільними,

    эозинофильными), а окрашивающиеся основними базофильными. Структури,

    сприймають як кислі, так і основні барвники, є

    нейтрофилъными (гетерофильными). Забарвлені препарати зазвичай зневоднюють в

    спиртах зростаючої міцності і прояснюють у ксилолі, бензолі, толуолі або

    деяких оліях. Для тривалого збереження зневоднений гістологічний зріз

    укладають між предметним та покривним склом у канадський бальзам або інші

    речовини. Готовий гістологічний препарат може бути використаний для вивчення

    під мікроскопом протягом багатьох років. Для електронної мікроскопії зрізи,

    отримані на ультрамикротоме, поміщають на спеціальні сітки, контрастують

    солями марганцю, кобальту й ін після чого переглядають у мікроскопі і

    фотографують. Отримані мікрофотографії служать об’єктом вивчення поряд з

    гістологічними препаратами.

    Методи дослідження хімічного складу та метаболізму клітин і тканин

    Для вивчення хімічного складу біологічних структур — локалізації

    речовин, їх концентрації та динаміки в процесах метаболізму застосовують

    спеціальні методи дослідження.

    Цито — та гістохімічні методи. Ці методи дозволяють виявляти локалізацію

    різних хімічних речовин в структурах клітин, тканин і органів — ДНК,

    РНК, білків, вуглеводів, ліпідів, амінокислот, мінеральних речовин, вітамінів,

    активність ферментів. Ці методи засновані на специфічності реакції між

    хімічним реактивом і субстратом, що входять до складу клітинних і тканинних

    структур, і фарбуванні продуктів хімічних реакцій. Для підвищення

    специфічності реакції часто застосовують ферментативний контроль. Наприклад, для

    виявлення в клітинах рибонуклеїнової кислоти (РНК) часто використовують

    галлоціанін — барвник з основними властивостями, а наявність РНК підтверджують

    контрольної обробкою рибонуклеазой, що розщеплює РНК. Галлоціанін

    забарвлює РНК в синьо-фіолетовий колір. Якщо зріз попередньо обробити

    рибонуклеазой, а потім пофарбувати галлоцианином, то відсутність фарбування

    підтверджує наявність у структурі рибонуклеїнової кислоти. Опис

    численних цито — і гістохімічних методів дається в спеціальних

    посібниках.

    В останні роки поєднання гістохімічних методів з методом електронної

    мікроскопії призвело до розвитку нового перспективного напряму —

    електронна гистохимии. Цей метод дозволяє вивчати локалізацію різних

    хімічних речовин не тільки на клітинному, але й на субклітинному і

    молекулярному рівнях. Для вивчення макромолекул клітин використовують дуже

    чутливі методи із застосуванням радіоактивних ізотопів і антитіл,

    що дозволяють виявити навіть невеликий вміст молекул (менш 1000).

    Радіоактивні ізотопи при розпаді ядра випускають заряджені частинки (електрони)

    або випромінювання (наприклад, гамма-промені), які можна зареєструвати в

    спеціальних приладах. Радіоактивні ізотопи використовують у методі

    радиоавтографии. Наприклад, з допомогою радіоізотопів 3Н-тимидина

    досліджують ДНК ядра, за допомогою 3Н-уридина — РНК.

    Метод радиоавтографии. Цей метод дає можливість найбільш повно вивчити обмін

    речовин у різних структурах. В основі методу лежить використання радіоактивних

    елементів (наприклад, фосфору — 32Р, вуглецю 14С,

    сірки — 35S, водню — 3H) або мічених ними з’єднань.

    Радіоактивні речовини в гістологічних зрізах виявляють за допомогою

    фотоемульсії, яку наносять на препарат і потім проявляють. У ділянках

    препарату, де фотоемульсія стикається з радіоактивною речовиною, відбувається

    фотореакція, в результаті якої утворюються засвічені ділянки (треки). Цим

    методом можна визначати, наприклад, швидкість включення мічених амінокислот в

    білки, освіта нуклеїнових кислот, обмін йоду в клітинах щитовидної залози

    інші

    імунофлюоресцентний Методи аналізу. Застосування антитіл. Антитіла —

    захисні білки, що виробляються плазмоцидами (похідними В-лімфоцитів) у відповідь

    на дію чужорідних речовин (антигенів). Кількість різних форм антитіл

    сягає мільйона. Кожне антитіло має ділянки для «впізнавання» молекул,

    викликали синтез цього антитіла. У зв’язку з високою специфічністю антитіл в

    щодо антигенів вони можуть бути використані для виявлення будь-яких білків

    клітки. Для виявлення локалізації білків антитіла фарбують флуоресцентними

    барвниками, а потім клітини вивчають за допомогою флюоресцентної мікроскопії.

    Антитіла можна використовувати також для вивчення антигенів на ультраструктурному

    рівні з допомогою електронного мікроскопа. Для цього антитіла мітять

    електронно-щільними частками (мікросфери колоїдного золота). Для посилення

    специфічності реакції застосовують моноклональні антитіла, що утворюються лінією

    клітин, — клонами, отриманої методом гібридом з однієї клітини. Метод гібридом

    дозволяє отримувати моноклональні антитіла з однаковою специфічністю і в

    необмежених кількостях.

    імунофлюоресцентний Методи аналізу широко та ефективно використовуються в

    сучасної гістології. Ці методи застосовуються для вивчення процесів

    диференціювання клітин, виявлення в них специфічних хімічних сполук і

    структур. Вони засновані на реакціях антиген — антитіло. Кожна клітина

    Короткий опис статті: гістологія аналіз Реферат: Дослідження в гістології Реферат: Дослідження в гістології

    Джерело: Реферат: Дослідження в гістології

    Також ви можете прочитати